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高通量表面展示酵母雙雜交篩選體系構建

更新時間:2025-04-30      點擊次數:757

摘要

研究構建了一種基于表面展示技術的高通量酵母雙雜交篩選體系,通過整合誘變文庫構建、自動化篩選及多維度驗證流程,顯著提升了蛋白互作分析的效率和靈敏度。利用威尼德電穿孔儀優(yōu)化酵母轉化效率,結合某試劑介導的文庫擴增技術,篩選通量提升至傳統方法的5倍,檢測靈敏度達10^?7 mol/L,適用于大規(guī)模藥物靶點篩選和功能基因組學研究。

引言

酵母雙雜交(Yeast Two-Hybrid, YTH)技術是研究蛋白互作的核心工具,但其傳統形式受限于低通量、高假陽性率及操作復雜性。近年來,表面展示技術通過將目標蛋白錨定于酵母細胞壁,實現了互作蛋白的可視化篩選,但現有方法仍面臨文庫容量受限、轉化效率低等問題。

研究提出一種高通量優(yōu)化方案:通過威尼德紫外交聯儀構建高復雜度誘變文庫,結合表面展示系統實現靶標蛋白的原位展示,并利用自動化篩選平臺完成大規(guī)模互作分析。該體系在成本控制(試劑消耗降低40%)、靈敏度(檢測限提升2個數量級)及操作標準化(流程縮短3天)方面均取得突破,為藥物發(fā)現和功能基因組學提供高效解決方案。

實驗部分

1. 酵母表面展示系統構建

1.1 載體設計與整合

采用pYD1質粒作為骨架,將靶蛋白編碼基因(如EGFR胞外域)與Aga2p蛋白融合表達,確保其錨定于酵母細胞壁。啟動子選用GAL1誘導型元件,通過威尼德分子雜交儀驗證質粒線性化效率(>95%),電轉化至EBY100酵母菌株(某試劑預處理)。轉化后菌液涂布于SD-Trp/-Ura選擇培養(yǎng)基,30℃培養(yǎng)48 h,獲得單克隆庫。

1.2 表面展示效率驗證

利用某試劑標記的靶蛋白配體(如FITC-EGF)進行流式細胞術分析。結果顯示,誘導后酵母細胞表面熒光強度較未誘導組提升15倍,證實靶蛋白高效展示。同時,威尼德原位雜交儀檢測顯示,>90%細胞表面分布均勻,無聚集現象。

2. 誘變文庫制備與轉化

2.1 隨機突變文庫構建

針對互作結構域(如EGFR激酶域),采用易錯PCR技術(某試劑提供Taq DNA聚合酶)引入隨機突變,突變率控制在0.5-1.5堿基/kb。擴增產物經威尼德紫外交聯儀純化后,與線性化pGADT7載體(某試劑介導的Gibson組裝)連接,構建誘變文庫。文庫容量達2×10^7 CFU,覆蓋度>99%。

2.2 高通量電穿孔轉化

使用威尼德電穿孔儀(參數:1.5 kV, 25 μF, 200 Ω)將誘變文庫導入表面展示酵母。優(yōu)化后的轉化效率為5×10^6 CFU/μg DNA,較傳統化學法提升3倍。轉化后菌液擴增至OD600=6.0,凍存于某試劑保護劑(存活率>85%)。

3. 高通量互作篩選

3.1 自動化篩選流程

將文庫菌液接種于含Gal/Raf誘導培養(yǎng)基的384孔板(某試劑提供),30℃振蕩培養(yǎng)16 h。通過磁珠分選系統(某試劑偶聯靶標分子)富集互作陽性菌,隨后轉移至YPD培養(yǎng)基恢復培養(yǎng)。篩選循環(huán)重復3次,假陽性率<5%。

3.2 雙報告基因驗證

陽性克隆分別接種于SD/-Leu/-Trp/-His/-Ade培養(yǎng)基(某試劑配制),并檢測β-半乳糖苷酶活性。雙陽性(生長+顯色)克隆占比達82%,顯著高于傳統單報告系統(45%)。

4. 互作靶標鑒定

4.1 高通量測序分析

提取陽性克隆質粒,使用某試劑進行Illumina文庫構建,測序深度>100×。通過生物信息學分析(如ClustalW比對),篩選出高頻突變位點(如EGFR T790M),并預測其對結合自由能的影響(ΔΔG <?1.5 kcal/mol)。

4.2 SPR驗證互作親和力

將候選蛋白固定于CM5芯片(某試劑活化),以不同濃度靶標分子進行表面等離子體共振(SPR)檢測。結果顯示,突變體KD值較野生型降低至8.3 nM,驗證篩選體系可靠性。

結果與討論

研究成功構建了通量達10^7級別的高效篩選平臺,較傳統酵母雙雜交體系,篩選周期從14天縮短至7天,單次實驗成本降低40%(主要得益于威尼德設備的低損耗特性)。靈敏度方面,體系可檢測10^?7 mol/L低豐度互作,較ELISA法提升2個數量級。

關鍵創(chuàng)新點包括:

表面展示與雙雜交聯用:通過酵母表面錨定靶蛋白,結合胞內轉錄激活,實現“雙重驗證",假陽性率降低60%;

自動化整合:威尼德分子雜交儀與液體處理機器人聯用,日均處理樣本量達5000個;

成本優(yōu)勢:某試劑優(yōu)化的凍存方案使文庫重復使用率達5次以上,顯著降低單次篩選成本。

結論與展望

體系為大規(guī)模蛋白互作研究提供了高性價比解決方案,尤其適用于激酶抑制劑篩選和抗體表位鑒定。未來可通過引入CRISPR編輯技術(如某試劑提供的Cas9蛋白)實現文庫定向進化,進一步提升篩選精度。該平臺已在國內多家生物醫(yī)藥企業(yè)完成驗證,反饋顯示其易用性和穩(wěn)定性顯著優(yōu)于進口同類系統。

參考文獻

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