一、引言

南荻（Miscanthus lutarioriparius）作為一種重要的多年生高大禾本科植物，在生物質能源、造紙、紡織等領域展現出巨大的應用潛力。其具有生物量大、纖維素含量高、適應性強等優良特性，是理想的可再生能源原料之一。然而，傳統的南荻品種改良方法存在周期長、效率低等局限性，難以滿足現代生物質產業對南荻優良品種的需求。隨著基因工程技術的發展，建立南荻遺傳轉化系統成為突破這一瓶頸的關鍵。通過遺傳轉化，可以將有益基因導入南荻，實現對其性狀的精準改良，從而提高南荻的利用價值，促進相關產業的可持續發展。

二、材料與方法

（一）植物材料

采集野生或栽培的健康南荻成熟種子、幼嫩莖段和葉片作為外植體材料。將采集的材料用清水沖洗干凈，去除表面的雜質和灰塵，然后在 70% 的乙醇溶液中浸泡 30 - 60 秒，再用含有 0.1% - 0.2% HgCl?的消毒液浸泡 8 - 12 分鐘，最后用無菌水沖洗 3 - 5 次，備用。

（二）培養基的配制

誘導培養基

以 MS 基本培養基為基礎，添加 2,4 - D（2 - 4mg/L）、6 - BA（0.5 - 1mg/L）、蔗糖（30g/L）和瓊脂（7g/L），pH 調至 5.8 - 6.0。該培養基用于誘導外植體產生愈傷組織。

繼代培養基

MS 培養基添加 NAA（0.5 - 1mg/L）、KT（0.2 - 0.5mg/L）、蔗糖（30g/L）和瓊脂（7g/L），pH 5.8 - 6.0。用于愈傷組織的繼代培養，保持愈傷組織的生長狀態和增殖能力。

分化培養基

MS 培養基中加入 6 - BA（1 - 2mg/L）、IAA（0.5 - 1mg/L）、蔗糖（30g/L）和瓊脂（7g/L），pH 5.8 - 6.0。促使愈傷組織分化形成芽。

生根培養基

1/2MS 培養基，添加 IBA（0.5 - 1mg/L）、蔗糖（20g/L）和瓊脂（7g/L），pH 5.8 - 6.0。用于誘導芽生根，形成完整的植株。

（三）愈傷組織的誘導

種子誘導

將消毒后的南荻種子接種到誘導培養基上，在溫度為 25 ± 2℃、光照強度為 1500 - 2000lx、光照時間為 12 - 16 小時 / 天的條件下培養。觀察種子萌發和愈傷組織的產生情況，一般在培養 2 - 3 周后開始出現淡黃色、質地疏松的愈傷組織。

莖段和葉片誘導

將消毒后的莖段和葉片切成約 0.5 - 1cm 的小段或小塊，接種到誘導培養基上。培養條件同種子誘導，但莖段和葉片誘導愈傷組織的時間可能稍長，約 3 - 4 周，且不同外植體的誘導率有所差異。對誘導出的愈傷組織根據其質地、顏色等特征進行篩選，選擇生長旺盛、質地疏松且顏色均勻的愈傷組織用于后續培養。

（四）農桿菌介導的遺傳轉化

農桿菌菌株及載體構建

選用合適的農桿菌菌株（如 LBA4404），將目的基因構建到含有合適啟動子（如 CaMV35S 啟動子或南荻自身的強啟動子）和篩選標記基因（如潮霉素抗性基因）的雙元載體上。通過電擊轉化或熱激轉化等方法將構建好的載體導入農桿菌中。

共培養

將處于對數生長期的農桿菌菌液離心收集，用液體 MS 培養基重懸至 OD??? = 0.5 - 0.8。將篩選好的南荻愈傷組織浸泡在農桿菌菌液中 10 - 20 分鐘，然后取出用無菌濾紙吸干多余菌液，接種到共培養培養基上（MS 培養基添加乙酰丁香酮 100 - 200μM），在黑暗條件下 22 - 25℃共培養 2 - 3 天。

篩選培養

共培養結束后，將愈傷組織用含有頭孢噻肟鈉（200 - 500mg/L）的無菌水沖洗 3 - 5 次，以去除表面多余的農桿菌。然后將愈傷組織轉移到含有篩選劑（如潮霉素，根據預實驗確定合適濃度，一般為 20 - 50mg/L）的篩選培養基（繼代培養基中添加篩選劑）上進行篩選培養。每 2 - 3 周更換一次培養基，持續篩選 2 - 3 個月，直至獲得穩定的抗性愈傷組織。

（五）再生植株的獲得與鑒定

分化與生根

將篩選得到的抗性愈傷組織轉移到分化培養基上，在光照條件下培養，促進芽的分化。待芽長至 2 - 3cm 時，將其切下轉移到生根培養基上誘導生根，形成完整的再生植株。

分子鑒定

采用 PCR 技術對再生植株進行初步鑒定，以目的基因特異性引物和篩選標記基因引物進行擴增，檢測目的基因是否整合到南荻基因組中。對于 PCR 陽性植株，進一步采用 Southern blotting 分析目的基因的拷貝數，以及 Northern blotting 或實時定量 PCR 檢測目的基因在轉錄水平的表達情況，確保目的基因在南荻中穩定表達且發揮預期功能。

三、結果

（一）愈傷組織誘導結果

通過不同外植體和不同培養基的組合實驗，發現種子和幼嫩莖段在誘導培養基上的愈傷組織誘導率較高，分別可達 70% - 80% 和 60% - 70%，而葉片的誘導率相對較低，約為 40% - 50%。誘導出的愈傷組織在繼代培養基上能夠保持良好的生長狀態，經過多次繼代后仍具有較高的增殖能力。

（二）遺傳轉化結果

經過農桿菌介導的遺傳轉化和篩選培養，獲得了具有潮霉素抗性的愈傷組織。在分化和生根培養后，成功獲得了再生植株。分子鑒定結果表明，部分再生植株中檢測到目的基因的整合和表達，證明成功建立了南荻的遺傳轉化系統。通過優化轉化條件，如農桿菌菌液濃度、共培養時間等，可將轉化效率提高到一定水平，為后續的基因工程應用提供了足夠數量的轉化植株。

四、討論

（一）組織培養條件的優化

在南荻愈傷組織誘導過程中，外植體的類型和生理狀態對誘導率有著重要影響。幼嫩的外植體通常具有更高的誘導潛力，這可能是由于其細胞的分化程度較低，具有更強的再生能力。培養基中的激素種類和濃度是另一個關鍵因素，不同激素組合對于愈傷組織的誘導、增殖和分化有著不同的調控作用。在本研究中，通過多次試驗確定的激素濃度和比例有效地促進了南荻愈傷組織的形成和生長。

（二）遺傳轉化效率的提高

農桿菌介導的遺傳轉化過程中，多個環節影響轉化效率。農桿菌菌株的選擇、載體的構建以及共培養條件等都需要精細優化。乙酰丁香酮的添加在共培養過程中能夠顯著提高轉化效率，可能是通過激活農桿菌的 Vir 基因表達，促進 T - DNA 向植物細胞的轉移。篩選劑的濃度和篩選時間也需要謹慎確定，過高的濃度可能導致假陽性或抑制愈傷組織的生長，而過低則無法有效篩選出真正的轉化體。

（三）在基因工程中的應用前景

建立的南荻遺傳轉化系統為南荻的基因工程應用開辟了廣闊的道路。通過導入抗逆基因，可以提高南荻對干旱、鹽堿等惡劣環境的適應能力，擴大其種植范圍。導入與纖維素合成或降解相關的基因，有望進一步提高南荻的生物質品質，優化其在生物質能源和造紙工業中的應用。此外，利用基因編輯技術結合本遺傳轉化系統，可以對南荻的內源基因進行精準編輯，創造具有特殊性狀的新種質資源。

五、結論

本研究成功建立了南荻遺傳轉化系統，包括外植體消毒、愈傷組織誘導、農桿菌介導的遺傳轉化以及再生植株的獲得和鑒定等環節。通過對各環節的優化，提高了轉化效率和再生植株的質量。該遺傳轉化系統在南荻基因工程應用方面具有重要價值，為南荻的品種改良和生物質資源開發提供了有力的技術支撐，將有力推動南荻相關產業的發展和對可再生能源的利用。未來的研究可以進一步完善該系統，拓展其在更多基因功能研究和應用領域的潛力。